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FlourCam便攜式光合聯(lián)用葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)
更新時(shí)間：2025-07-01
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植物的光合速率、蒸騰速率、氣孔導(dǎo)度等光合作用參數(shù)可以全面衡量植物光合作用的強(qiáng)度和能力；而葉綠素?zé)晒獠粌H能反映光能吸收、激發(fā)能傳遞和光化學(xué)反應(yīng)等光合作用的原初反應(yīng)過(guò)程，而且與電子傳遞、質(zhì)子梯度的建立及ATP合成和CO2固定等過(guò)程有關(guān)。
FlourCam便攜式光合聯(lián)用葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)
植物的光合速率、蒸騰速率、氣孔導(dǎo)度等光合作用參數(shù)可以全面衡量植物光合作用的強(qiáng)度和能力；而葉綠素?zé)晒獠粌H能反映光能吸收、激發(fā)能傳遞和光化學(xué)反應(yīng)等光合作用的原初反應(yīng)過(guò)程，而且與電子傳遞、質(zhì)子梯度的建立及ATP合成和CO2固定等過(guò)程有關(guān)。對(duì)兩者的結(jié)合測(cè)量在植物光合生理研究中缺一不可，對(duì)于衡量植物生長(zhǎng)狀況、不同脅迫處理對(duì)植物光系統(tǒng)的影響、評(píng)價(jià)生態(tài)系統(tǒng)碳收支與氣候變化的相互關(guān)系、植物光系統(tǒng)對(duì)變化響應(yīng)有著不可替代的作用。
FlourCam便攜式光合聯(lián)用葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)由FluorCam便攜式植物熒光成像儀、LCpro-SD光合測(cè)量?jī)x（或LCi-SD光合測(cè)量?jī)x）和PAM調(diào)制式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x組成，組成了zui為全面、功能強(qiáng)大的植物光合生理研究工具。
系統(tǒng)組成
l FluorCam便攜式植物熒光成像儀
FluorCam便攜式植物熒光成像儀被設(shè)計(jì)用來(lái)在田間和實(shí)驗(yàn)室內(nèi)對(duì)葉片和小植物的熒光參數(shù)成像進(jìn)行動(dòng)力學(xué)解析，典型的研究區(qū)域?yàn)?.5x 2.5 cm。在所有應(yīng)用中，系統(tǒng)可以對(duì)光化光和飽和光誘導(dǎo)的熒光瞬變過(guò)程進(jìn)行成像，光化光照射的時(shí)間和強(qiáng)度可以由用戶自定義的程序來(lái)決定。軟件包中包含了zui常用的實(shí)驗(yàn)程序和簡(jiǎn)單實(shí)用且功能強(qiáng)大的程序設(shè)計(jì)語(yǔ)言，熟練的研究人員可以設(shè)計(jì)自己的閃光序列和測(cè)量過(guò)程。這是一個(gè)輕巧的便攜系統(tǒng)，尤其適用于野外實(shí)驗(yàn)。系統(tǒng)可以通過(guò)肩背便攜包中的密封鋰電池在野外進(jìn)行供電，穩(wěn)固輕巧的三腳架使得野外測(cè)量變得簡(jiǎn)單易行。
FluorCam便攜式植物熒光成像儀既可以單獨(dú)使用，也可以通過(guò)適配葉夾與LCpro-SD光合測(cè)量?jī)x組成聯(lián)用系統(tǒng)，同步測(cè)量植物光合和葉綠素?zé)晒狻?/span>
l 
LCpro-SD光合測(cè)量?jī)x
LCPro-SD便攜式光合儀為智能型便攜式光合作用測(cè)定儀，用以測(cè)量植物葉片的光合速率、蒸騰速率、氣孔導(dǎo)度等與植物光合作用相關(guān)的參數(shù)。儀器應(yīng)用IRGA（紅外氣體分析）CO2分析模塊和雙激光調(diào)諧快速響應(yīng)水蒸氣傳感器精密測(cè)量葉片表面CO2濃度及水分的變化情況來(lái)考察葉片與植物光合作用相關(guān)的參數(shù)。通過(guò)人工光源、CO2控制單元和溫度控制單元可以同時(shí)精確調(diào)控環(huán)境條件，從而測(cè)定光強(qiáng)、CO2濃度和溫度對(duì)植物光合系統(tǒng)的影響。本儀器可在高濕度、高塵埃等惡劣環(huán)境中使用，具有廣泛的適用性。
l PAM調(diào)制式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x
選配一、OS5p調(diào)制葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x
OS5p調(diào)制葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x通過(guò)測(cè)量葉綠素?zé)晒饪梢苑从硯缀跛蓄愋偷闹参锬婢趁{迫，測(cè)量模式多于目前的其他任何一款便攜式熒光儀，采用創(chuàng)新性技術(shù)，提高測(cè)量結(jié)果可靠性，野外便攜，持久耐用。通過(guò)光合-熒光聯(lián)用適配器可以與LCpro-SD光合測(cè)量?jī)x組成聯(lián)用系統(tǒng)，可以實(shí)時(shí)同步測(cè)量植物的光合和葉綠素?zé)晒狻?/span>
選配二、FP100手持式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x
FP100手持式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x是現(xiàn)在世界上zui為輕便小巧的葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x，但在功能上*不遜于其他便攜式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x。它采用調(diào)試式熒光測(cè)量技術(shù)，可設(shè)置多種參數(shù)，方便測(cè)量多種植物葉綠素?zé)晒狻Ｍ庥^小巧，方便攜帶，使用靈活，操作簡(jiǎn)單，經(jīng)濟(jì)耐用，精度高穩(wěn)定性好。自帶暗適應(yīng)葉夾，操作簡(jiǎn)便。
應(yīng)用領(lǐng)域
l 
植物光合生理研究
l 植物抗脅迫研究
l 碳源碳匯研究
l 植物對(duì)氣候變化的相應(yīng)及其機(jī)理
l 作物新品種篩選
l 生物和非生物脅迫的檢測(cè)
l 植物抗脅迫能力或者易感性研究
l 氣孔非均一性研究
l 代謝混亂研究
l 長(zhǎng)勢(shì)與產(chǎn)量評(píng)估
l 植物——微生物交互作用研究
l 植物——原生動(dòng)物交互作用研究
技術(shù)特點(diǎn)
l 全部為便攜式設(shè)計(jì)，體積輕小，可用于野外測(cè)量，也可用于室內(nèi)實(shí)驗(yàn)
l 可在惡劣環(huán)境下使用，均配有可更換電池，采用低能耗技術(shù)，可以支持長(zhǎng)時(shí)間野外實(shí)驗(yàn)
l 材料經(jīng)精心選擇，以確保測(cè)量精度
l 數(shù)據(jù)存儲(chǔ)量大，讀取簡(jiǎn)便
l 維護(hù)方便，所有區(qū)域都很容易清潔
l 具備實(shí)時(shí)數(shù)據(jù)顯示功能
技術(shù)指標(biāo)
FluorCam便攜式植物熒光成像儀
· 可以被安裝在LCpro-SD等氣體交換系統(tǒng)光合儀的標(biāo)準(zhǔn)葉室上
· 高靈敏度CCD鏡頭，時(shí)間分辨率可達(dá)每秒50幀，512 x 512 像素
· 可測(cè)熒光參數(shù)：F0, Fm, FV, FO', Fm', FV', QY(II)), NPQ, FV/Fm, FV'/Fm', Rfd, qN, qP等50多個(gè)
· 4塊超亮LED光源板，均一照明面積2.5 X 2.5 cm。
· 測(cè)量光為620nm紅光，其它波段（白光, 藍(lán)光455 nm）可選，持續(xù)時(shí)間10µs - 100µs可調(diào)；
· 
光化學(xué)光、飽和光閃，標(biāo)配紅光（620nm）或藍(lán)光（455nm）
· 遠(yuǎn)紅光：IR735nm
· 給光制度：靜態(tài)或者動(dòng)態(tài)模式
· 自定義實(shí)驗(yàn)程序：多樣化的時(shí)間順序，專門的程序語(yǔ)言和腳本
· FluorCam軟件包括下列實(shí)驗(yàn)測(cè)量程序（protocols）：Fv/Fm、Kautsky誘導(dǎo)效應(yīng)、熒光淬滅分析、光響應(yīng)曲線等，可任意調(diào)整測(cè)量時(shí)間、光化學(xué)光持續(xù)時(shí)間、測(cè)量間隔、光強(qiáng)等參數(shù)
· FluorCam軟件具圖像處理、選區(qū)ROI、測(cè)量分析等功能，可輸出成像視頻、圖表、直方圖等
· CCD檢測(cè)器帶寬：400–1000 nm
· 像素尺寸：8.2 µm x 8.4 µm
· 成像頻率：50 張圖片每秒
· 通訊方式：USB 2.0
· 重量：1.8 kg
LCpro-SD光合測(cè)量?jī)x
l CO2測(cè)量范圍：0-3000ppm
l 
CO2測(cè)量分辨率：1ppm
l CO2采用紅外分析，差分開路測(cè)量系統(tǒng)，自動(dòng)置零，自動(dòng)氣壓和溫度補(bǔ)償
l H2O測(cè)量范圍：0-75 mbar
l H2O測(cè)量分辨率：0.1mbar
l PAR測(cè)量范圍：0-3000 μmol m-2 s-1，余弦校正
l 葉室溫度：-5 - 50℃ 精度：±0.2℃
l 葉片溫度：-5 - 50℃ 精度：±1.5℃
l 空氣泵流量：100 - 500ml / min
l CO2控制：由內(nèi)部CO2供應(yīng)系統(tǒng)提供zui高2000ppm
l H2O控制：可高于或低于環(huán)境條件
l 溫度控制：由微型peltier元件控制，可高于或低于環(huán)境14℃
l PAR控制：由高效、低熱紅/藍(lán)LED陣列單元控制，zui高2000μmol m-2 s-1可選配多種帶有光源的可控溫葉室、葉夾
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寬葉葉室 | 窄葉葉室 | 針葉葉室 | 土壤呼吸室
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小型葉葉室 | 小型草本植物群落測(cè)量室 | 整株擬南芥測(cè)量室 | 果實(shí)測(cè)量室 |
l 數(shù)據(jù)存儲(chǔ)：1G SD卡，可存儲(chǔ)16,000,000組典型數(shù)據(jù)
l 供電系統(tǒng)：內(nèi)置12V 7AH蓄電池，可持續(xù)工作至16小時(shí)，智能充電器
l 尺寸：主機(jī)230×110×170mm，測(cè)量手柄300×80×75mm
l 重量：主機(jī)4.4Kg，測(cè)量手柄0.8Kg
OS5p調(diào)制葉綠素?zé)晒?/span>測(cè)量?jī)x
· 光源
飽和脈沖：鹵光燈與LED。鹵光燈zui大光強(qiáng)0-15,000 μmolm-2s-1；LED 0-4,500 μmolm-2s-1
調(diào)制光：紅光660nm LED，和藍(lán)光450nm LED
光化光：可調(diào)。LED光源：0-3,000 μmolm-2s-1
鹵光燈：0-6,000μmolm-2s-1
遠(yuǎn)紅光：735nmLED(用來(lái)測(cè)定Fod或Fo’)，強(qiáng)度可調(diào)。
· 檢測(cè)模式：脈沖調(diào)制模式
· 探測(cè)器&過(guò)濾器：光敏二極管插孔，700nm -750nm帶通濾波器
· 調(diào)制頻率：25Hz –1MHz自動(dòng)調(diào)整。
· 采樣周期：2s – 45min或者2s-16h范圍內(nèi)可調(diào)
· 數(shù)據(jù)存儲(chǔ)：1Gb的內(nèi)存容量，能存儲(chǔ)上萬(wàn)組數(shù)據(jù)。
· 數(shù)據(jù)輸出：MMC/SD卡，以太網(wǎng)絡(luò)，USB&RS232標(biāo)準(zhǔn)輸出
· 主機(jī)顯示屏：320×240 LCD，帶背景燈，觸摸屏
· 供電：71瓦時(shí)可充鋰電池，電池電量：支持達(dá)20小時(shí)連續(xù)測(cè)量
· 尺寸：13cm×18cm×14cm
· 重量：1.4kg
FP100手持式葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x
· 測(cè)量參數(shù)：Fo，Ft，Fm，Fm´，QY，OJIP, NPQ 1,2 和光曲線1,2,3。
· 測(cè)量光：藍(lán)光（可選紅光或白光）
· 
光化學(xué)光和飽和光：0–3000µmol (photons).m-2.s-1可調(diào)
· 波長(zhǎng)檢測(cè)范圍：697nm-750nm
· BOIS：可升級(jí)
· 通訊：USB接口
· 存儲(chǔ)：4M
· 數(shù)據(jù)存儲(chǔ)：100,000個(gè)
· 顯示：2 x 8字符黑白液晶屏
· 鍵盤：密封防水設(shè)計(jì)2鍵
· 自動(dòng)關(guān)機(jī)：5分鐘無(wú)操作
· 電源：4 AAA堿性電池或充電電池
· 電池壽命：持續(xù)測(cè)量70 h
· 尺寸：120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"
· 重量：180 g, 6.5 oz
· 軟件：FluorPen2.0, Windows 2000，XP或更高，實(shí)時(shí)顯示和遙控，植入GPS繪圖，EXCEL輸出
· PAR傳感器：讀數(shù)單位µmol(photons)/m².s，可顯示讀數(shù)，檢測(cè)范圍400-700 nm
應(yīng)用案例
1. 光合熒光成像聯(lián)用
Andrej Pavlovic博士利用便攜式光合聯(lián)用型葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)FC1000-LC，對(duì)捕蠅草等捕食性植物進(jìn)行了葉綠素?zé)晒馓匦约肮夂献饔醚芯浚洳┦吭谧x期間發(fā)表的研究論文“Trap closure and prey retention in Venus flytrap (Dionaea muscipula) temporarily reduces photosynthesis and stimulates respiration”因此獲Annals of Botany 研究生獎(jiǎng)（Graduate Prize）。
右圖為Pavlovic博士利用FC1000-LC和光合儀聯(lián)用的研究結(jié)果，對(duì)捕蠅草的“陷阱”進(jìn)行刺激（圖中箭頭所示）后，其光合作用（上圖）、有效光量子產(chǎn)量（葉綠素?zé)晒鈪?shù)，見中圖所示）均立即降低，其呼吸作用（下圖）隨之增強(qiáng)。
2. 光合熒光聯(lián)用
1） 基本應(yīng)用
對(duì)多花薔薇（Rosa multiflora）的凈光合速率、量子產(chǎn)額和電子傳遞速率進(jìn)行同步測(cè)量。
這種同步測(cè)量提高了獲取數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性，盡量減小了環(huán)境因素和植物本身生理狀態(tài)對(duì)數(shù)據(jù)的影響，但沒有將光合和葉綠素?zé)晒獾臄?shù)據(jù)有機(jī)結(jié)合起來(lái)。
2） 高級(jí)應(yīng)用
同步測(cè)定重度干旱脅迫下如意蔓（Plectranthus verticillatus）光合速率和葉綠素?zé)晒獾南嚓P(guān)性。使用光合儀配備的人工光源模擬不同光強(qiáng)，同時(shí)測(cè)定凈光合速率、量子產(chǎn)額和電子傳遞速率。
① ΦPSII和ΦCO2的相互關(guān)系
CO2量子產(chǎn)量和PSII量子產(chǎn)量并沒有呈線性關(guān)系。ΦPSII的升高速度要高于ΦCO2，表明如意蔓在干旱脅迫下有較強(qiáng)的光呼吸。
② Pn和ETR的光響應(yīng)曲線
同步測(cè)定如意蔓光合速率和ETR的光響應(yīng)曲線。發(fā)現(xiàn)兩者的變化趨勢(shì)基本相同。在光強(qiáng)大約為500μmol m-2s-1時(shí)達(dá)到zui大。在更高的光強(qiáng)下，因?yàn)楣庖种贫饾u下降。
產(chǎn)地：歐洲、美國(guó)
參考文獻(xiàn)（僅2009年后部分文獻(xiàn)）
1. Photosynthetic characterization of Australian pitcher plant Cephalotus follicularis. A Pavlovi, 2011. Photosynthetica
2. Activation of violaxanthin cycle in darkness is a common response to different abiotic stresses: a case study in Pelvetia canaliculata. B Fernandez-Marin, et al, 2011. BMC Plant Biology
3. Engineered drought tolerance in tomato plants is reflected in chlorophyll fluorescence emission. KB Mishra, et al, 2011. Plant Science
4. A Novel Component of the Disulfide-Reducing Pathway Required for Cytochrome c Assembly in Plastids. ST Gabilly, et al, 2011. Genetics
5. Chlorophyll fluorescence emission as a reporter on cold tolerance in Arabidopsis thaliana accessions. A Mishra, et al, 2011. Plant Signaling & behavior
6. Evidence for a role of raffinose in stabilizing photosystem II during freeze–thaw cycles. M Knaupp, et al, 2011. Planta
7. On the mechanism underlying photosynthetic limitation upon trigger hair irritation in the carnivorous plant Venus flytrap (Dionaea muscipula Ellis). A Pavlovi?, et al, 2011. Journal of experimental botany
8. Variation in seedling freezing response is associated with climate in Larrea. JS Medeiros, et al, 2011. Oecologia
9. Nutritional benefit from leaf litter utilization in the pitcher plant Nepenthes ampullaria. A Pavlovi?, et al, 2011. Plant, Cell & Environment
10. At mutant Arabidopsis plants induce compensation mechanisms to reduce the negative effects of the mutation. I Majláth, et al, 2011. Journal of plant physiology
11. Root nutrient uptake enhances photosynthetic assimilation in prey-deprived carnivorous pitcher plant Nepenthes talangensis. A Pavlovi?, et al, 2010. Photosynthetica
12. Gabaculine alters plastid development and differentially affects abundance of plastid-encoded DPOR and nuclear-encoded GluTR and FLU-like proteins in spruce cotyledons. V Demko, et al, 2010. Journal of Plant Physiology
13. Spatio-temporal changes of photosynthesis in carnivorous plants in response to prey capture, retention and digestion. A Pavlovi?, 2010. Plant Signaling & Behavior
14. Trap closure and prey retention in Venus flytrap (Dionaea muscipula) temporarily reduces photosynthesis and stimulates respiration. A Pavlovi?, et al, 2010. Annals of botany
15. 冰核細(xì)菌對(duì)低溫脅迫下枇杷光合參數(shù)和葉綠素?zé)晒鈪?shù)的影響。鄭國(guó)華等, 2010。中國(guó)生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)
16. Fluoranthene influences endogenous abscisic acid level and primary photosynthetic processes in pea (Pisum sativum L.) plants in vitro. L Váňová, et al, 2009. Plant Growth Regulation
17. Feeding enhances photosynthetic efficiency in the carnivorous pitcher plant Nepenthes talangensis. A Pavlovi?, et al, 2009. Annals of botany
18. Chlorophyll biosynthesis and chloroplast development in etiolated seedlings of Ginkgo biloba L.. A Pavlovi?, et al, 2009. Photosynthetica
19. Water use ef?ciency and photosynthesis of glyphosate-resistant soybean as affected by glyphosate, Zobiole LHS et.al. 2010, Pesticide Biochemistry and Physiology
20. Nutrient accumulation and photosynthesis in glyphosate-resistant soybeans is reduced under glyphosate use, Zobiole LHS et.al. 2010, Journal of Plant Nutrition
21. Membrane transporters and carbon metabolism implicated in chloride homeostasis differentiate salt stress responses in tolerant and sensitive Citrus rootstocks, Brumós J et.al. 2009, Funct Integr Genomics
22. Maintenance of a high photosynthetic performance is linked to flooding tolerance in citrus, Arbona V et.al. 2009, Environmental and Experimental Botany
23. Relationship between salt tolerance and photosynthetic machinery performance in citrus, López-Climent MF et.al. 2008, Environmental and Experimental Botany
24. The Effects of Elevated CO2 on Tropical Trees Are Related to Successional Status and Soil Nutritional Conditions, Martinez CA et.al. 2008, Photosynthesis. Energy from the Sun
25. Antioxidant response and photosynthetic characteristics of Xerophyta viscosa Baker and Digitaria sanguinalis L. leaves induced by high light, Ekmekci Y et.al. 2004, Israel Journal of Plant Sciences
26. Effect of Photorespiratory C2 Acids on CO2 Assimilation, PS II Photochemistry and the Xanthophyll Cycle in Maize, González-Moro MB, et.al. 2003, Photosynthesis Research
27. Growth and production of buckwheat (Fagopyrum esculentum) treated with reduced, ambient, and enhanced UV-B radiation, Gaberš?ik A et.al. 2002, Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology